دوره 22، شماره 5 - ( آذر و دی 1397 )                   جلد 22 شماره 5 صفحات 36-43 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Hamedi Asl D, Rahmani B, Naserpour Farivar T, Haj Manoochehri F, Peymani A. Effect of Helicobacter pylori, black tea and sodium bicarbonate on iron metabolism and MDCK cell survival. J Qazvin Univ Med Sci. 2018; 22 (5) :36-43
URL: http://journal.qums.ac.ir/article-1-2710-fa.html
حامدی اصل داریوش، رحمانی بابک، ناصرپور فریور تقی، حاج منوچهری فاطمه، پیمانی امیر. بررسی تأثیر هلیکوباکترپیلوری، چای سیاه و جوش شیرین بر روی متابولیسم آهن و بقای رده سلولی MDCK. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی قزوین. 1397; 22 (5) :36-43

URL: http://journal.qums.ac.ir/article-1-2710-fa.html


1- گروه پزشکی مولکولی دانشگاه علوم پزشکی قزوین، قزوین، ایران
2- مرکز تحقیقات میکروب شناسی پزشکی دانشگاه علوم پزشکی قزوین، قزوین، ایران
3- گروه پاتولوژی دانشگاه علوم پزشکی قزوین، قزوین، ایران
4- مرکز تحقیقات میکروب شناسی پزشکی دانشگاه علوم پزشکی قزوین، قزوین، ایران ، a.peymani@gmail.com
چکیده:   (1170 مشاهده)
زمینه:کم ­خونی فقر آهن شایع ­ترین اختلال تغذیه­ ای در جهان می ­باشد. رژیم غذایی و عفونت هلیکوباکترپیلوری از جمله عوامل مطرح در بروز این اختلال می ­باشند.
هدف: در این مطالعه تأثیر عصاره چای سیاه و جوش شیرین در کنار عفونت هلیکوباکترپیلوری بر روی ژن ­های دخیل در جذب و ذخیره آهن و تکثیر سلولی مورد بررسی قرار گرفته است.
مواد و روش ­ها: کشت همزمان رده سلولی MDCK و هلیکوباکترپیلوری تحت تأثیر غلظت­ های 10، 20، 40 و 80 میکروگرم در میلی­لیتر عصاره چای و 30، 40، 60 و 100 میلی­ مولار جوش شیرین در زمان­ های 24 و 48 ساعت انجام گرفت. تأثیر تیمار بر بقای سلولی توسط رنگ ­آمیزی تریپان بلو و بیان ژن ­های MYC ،TFRC ،FTH1 ،IRP2 ،IRP1و NDRG1 با روش Real-time PCR بررسی و با آزمون آماری آنووا و نمونه­ های مستقل تی آنالیز گردید.
یافته  ­ها: تغییر معناداری از بیان ژن­ های دخیل در متابولیسم آهن تحت تاثیر تیمار چای، جوش شیرین و هلیکوباکترپیلوری در رده سلولی MDCK مشاهده نشد. افزایش بیان ژن MYC تحت تأثیر تیمار چای و بی‌کربنات در حضور هلیکوباکترپیلوری در زمان 24 ساعت و تحت تاثیر عصاره چای در زمان 48 ساعت بدون حضور هلیکوباکترپیلوری مشاهده شد (0/05P<). همچنین افزایش بیان ژن NDRG1 با و بدون حضور هلیکوباکترپیلوری در زمان 24 و 48 ساعت تحت تیمار عصاره چای، مشاهده شد (0/05P<).
نتیجه­ گیری: نتایج نشان می­ دهد که بی­کربنات سدیم و چای به تنهایی تأثیری بر وضعیت آهن ندارند. با توجه به افزایش بیان ژن MYC  تحت تأثیر عصاره چای، کاهش مصرف چای به ­عنوان یک راهکار پیشگیری از خطر بدخیمی پیشنهاد می­ شود. 
واژه‌های کلیدی: آهن، چای، جوش شیرین، هلیکوباکترپیلوری
متن کامل [PDF 169 kb]   (263 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: میکروب شناسی
دریافت: ۱۳۹۷/۴/۲۱ | پذیرش: ۱۳۹۷/۷/۱۹ | انتشار: ۱۳۹۷/۱۱/۸

فهرست منابع
1. Chifman J, Laubenbacher R, Torti SV. A systems biology approach to iron metabolism. Adv Exp Med Biol 2014; 844: 201-25. [DOI] [PubMed]
2. Pereira R.C. Diniz A.dS. Ferreira L.O.C. New findings on iron absorption conditioning factors. Brazilian Journal of Mother and Child Health 2004; 4(3): 8-241.
3. Hurrell RF, Reddy M, Cook JD. Inhibition of non-haem iron absorption in man by polyphenolic-containing beverages. Br J Nutr 1999; 81(4): 289-95. [DOI] [PubMed]
4. O'Neil-Cutting MA, Crosby WH. The effect of antacids on the absorption of simultaneously ingested iron. JAMA 1986; 255(11): 1468-70 doi: 10.1001/jama.255.11.1468. [PubMed]
5. Franceschi F, Zuccala G, Roccarina D, Gasbarrini A. Clinical effects of Helicobacter pylori outside the stomach. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2014; 11(4): 234-42. [DOI] [PubMed]
6. Burns M, Muthupalani S, Ge Z, Wang TC, Bakthavatchalu V, Cunningham C, et al. Helicobacter pylori infection induces anemia, depletes serum iron storage, and alters local iron-related and adult brain gene expression in male INS-GAS mice. PLoS One 2015; 10(11): e0142630. [DOI] [PubMed]
7. Noto JM, Gaddy JA, Lee JY, Piazuelo MB, Friedman DB, Colvin DC, et al. Iron deficiency accelerates Helicobacter pylori-induced carcinogenesis in rodents and humans. J Clin Invest 2013; 123(1): 479-92. [DOI] [PubMed]
8. Cairo G, Recalcati S. Iron-regulatory proteins: molecular biology and pathophysiological implications. Expert Rev Mol Med 2007; 9(33): 1-13. [DOI] [PubMed]
9. Maffettone C, Chen G, Drozdov I, Ouzounis C, Pantopoulos K. Tumorigenic properties of iron regulatory protein 2 (IRP2) mediated by its specific 73-amino acids insert. PLoS One 2010; 5(4): e10163. [DOI] [PubMed]
10. Fraser A. Essential human genes. Cell Syst 2015; 1(6): 381-2. [DOI] [PubMed]
11. Kovacevic Z, Fu D, Richardson DR. The iron-regulated metastasis suppressor, Ndrg-1: identification of novel molecular targets. Biochim Biophys Acta 2008; 1783(10): 1981-92. [DOI] [PubMed]
12. Kim SS, Meitner P, Konkin TA, Cho YS, Resnick MB, Moss SF. Altered expression of Skp2, c-Myc and p27 proteins but not mRNA after H. pylori eradication in chronic gastritis. Mod Pathol 2006; 19(1): 49-58. doi: 10. 1038/modpathol.380047613. [PubMed]
13. Le NT, Richardson DR. Iron chelators with high antiproliferative activity up-regulate the expression of a growth inhibitory and metastasis suppressor gene: a link between iron metabolism and proliferation. Blood 2004; 104(9): 2967-75. [DOI] [PubMed]
14. Kyriakou D, Eliopoulos AG, Papadakis A, Alexandrakis M, Eliopoulos GD. Decreased expression of c-myc oncoprotein by peripheral blood mononuclear cells in thalassaemia patients receiving desferrioxamine. Eur J Haematol 1998; 60(1): 21-7. [DOI] [PubMed]
15. Blanchard TG, Nedrud JG. Laboratory maintenance of helicobacter species. Curr Protoc Microbiol 2006; Chapter 8: Unit8B 1. [DOI] [PubMed]
16. Robriquet F, Lardenois A, Babarit C, Larcher T, Dubreil L, Leroux I, et al. differential gene expression profiling of dystrophic dog muscle after MuStem cell transplantation. PLoS One 2015; 10(5): e0123336. [DOI] [PubMed]
17. Basu D, Walkiewicz MP, Frieman M, Baric RS, Auble DT, Engel DA. Novel influenza virus NS1 antagonists block replication and restore innate immune function. J Virol 2009; 83(4): 1881-91. doi: 10.1128/JVI.01805-08. [PubMed]
18. Angstadt AY, Motsinger-Reif A, Thomas R, Kisseberth WC, Guillermo Couto C, Duval DL, et al. Characterization of canine osteosarcoma by array comparative genomic hybridization and RT-qPCR: signatures of genomic imbalance in canine osteosarcoma parallel the human counterpart. Genes Chromosomes Cancer 2011; 50(11): 859-74. [DOI] [PubMed]
19. Bruun CS, Jaderlund KH, Berendt M, Jensen KB, Spodsberg EH, Gredal H, et al. A Gly98Val mutation in the N-Myc downstream regulated gene 1 (NDRG1) in Alaskan Malamutes with polyneuropathy. PLoS One 2013; 8(2): e54547. [DOI] [PubMed]
20. Pfaffl MW. A new mathematical model for relative quantification in real-time RT-PCR. Nucleic Acids Res 2001; 29(9): e45. [DOI] [PubMed]
21. Fakhri Y, Amanidaz N, Zandsalimi Y, Dadar M, Moradi A, Moradi B, et al. Association between sodium bicarbonate consumption and human health: a systematic review. Int J Med Res Health Sci 2016; 5(8): 22-9.
22. Delimont NM, Haub MD, Lindshield BL. The impact of tannin consumption on iron bioavailability and status: a narrative review. Curr Dev Nutr 2017; 1(2): 1-12. [DOI] [PubMed]
23. Ciacci C Sabbatini F, Cavallaro R, Castiglione F, Di Bella S, Iovino P, et al. Helicobacter pylori impairs iron absorption in infected individuals. Dig Liver Dis 2004; 36(7): 455-60. [DOI] [PubMed]
24. Hurrell R, Egli I. Iron bioavailability and dietary reference values. Am J Clin Nutr 2010; 91(5): 1461S-7. [DOI] [PubMed]
25. Beck KL, Conlon CA, Kruger R, Coad J. Dietary determinants of and possible solutions to iron deficiency for young women living in industrialized countries: a review. Nutrients 2014; 6(9): 3747-76. [DOI] [PubMed]
26. Gabay M, Li Y, Felsher DW. MYC activation is a hallmark of cancer initiation and maintenance. Cold Spring Harb Perspect Med 2014; 4(6). pii: a014241. doi: 10.1101/ cshperspect.a014241. [PubMed]
27. Montague JA, Butler LM, Wu AH, Genkinger JM, Koh WP, Wong AS, et al. Green and black tea intake in relation to prostate cancer risk among Singapore Chinese. Cancer Causes Control 2012; 23(10): 1635-41. [DOI] [PubMed]
28. Konarikova K, Jezovicova M, Kerestes J, Gbelcova H, Durackova Z, Zitnanova I. Anticancer effect of black tea extract in human cancer cell lines. Springerplus 2015; 4: 127. [DOI] [PubMed]
29. Su LJ, Arab L. Tea consumption and the reduced risk of colon cancer -- results from a national prospective cohort study. Public Health Nutr 2002; 5(3): 419-25. [DOI] [PubMed]
30. Ghaemi A, Mohmmadi I, Shoae Hassani A, Hamdi K, Ordouzadeh N. Inhibitory effect of green and black teas Ethyl acetate extracts on helicobacter pylori the causative agent of peptic ulcers. J Qazvin Univ Med Sci 2010; 13(4) :12-18. [In Persian]
31. Miura K, Hughes MC, Arovah NI, van der Pols JC, Green AC. Black tea consumption and risk of skin cancer: an 11-year prospective study. Nutr Cancer 2015; 67(7): 1049-55. [DOI] [PubMed]
32. Zamora-Ros R, Lujan-Barroso L, Bueno-de-Mesquita HB, Dik VK, Boeing H, Steffen A, et al. Tea and coffee consumption and risk of esophageal cancer: the European prospective investigation into cancer and nutrition study. Int J Cancer 2014; 135(6): 1470-9. [DOI] [PubMed]
33. Askari F, Kardoust parizi M, Rashidkhani B. Black tea and coffee intake and prostate cancer: A case-control study. Scientific J Ilam Univ Med Sci 2014; 22(6): 60-5. [In Persian]
34. Islami F, Pourshams A, Nasrollahzadeh D, Kamangar F, Fahimi S, Shakeri R, et al. Tea drinking habits and oesophageal cancer in a high risk area in northern Iran: population based case-control study. BMJ 2009; 338: b929. [DOI] [PubMed]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی قزوین می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2019 All Rights Reserved | The Journal of Qazvin University of Medical Sciences

Designed & Developed by : Yektaweb